Электронные версии научных журналов Пользователь: гость        
Скрыть Левое Меню
Временная Коллекция

Аннотация статьи
Молекулярная биология

 -  том 42, № 1, Январь-Февраль 2008, С. 96-101 Помощь

[ Предыдущий / Следующий Обзор | Содержание Выпуска | Конец Страницы ] Удалить из Корзины Добавить в Корзину Удалить из Коллекции Добавить в Коллекцию

Цена Продукта:  20.00 USD;  Скидка Продукта:  0.0%;

Полный текст: [PDF (355Kb)] |  
 
ПОТЕРЯ ГЕТЕРОЗИГОТНОСТИ И МИКРОСАТЕЛЛИТНАЯ НЕСТАБИЛЬНОСТЬ В СТРОМАЛЬНЫХ И ЭПИТЕЛИАЛЬНЫХ КЛЕТКАХ РАКА ПРЕДСТАТЕЛЬНОЙ ЖЕЛЕЗЫ
Т. В. Кекеева1,2, О. П. Попова2, П. В. Шегай3, Л. Э. Завалишина3, Ю. Ю. Андреева3, Д. В. Залетаев1,2, М. В. Немцова1,2
1Медико-генетический научный центр Российской академии медицинских наук, Москва, 115478
2Научно-исследовательский институт молекулярной медицины при Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова, Москва, 119992
3Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена, Москва, 125284

Поступила в редакцию 27.03.2007 г.
В окончательной редакции 13.04.2007 г.
Ключевые слова: рак предстательной железы, микродиссекция, потеря гетерозиготности, микросателлитная нестабильность, строма опухоли.

За последнее десятилетие интенсивного изучения опухолевого микроокружения получены многочисленные данные, свидетельствующие о критической роли стромы в канцерогенезе. Накопление генетических нарушений характерно не только для опухолевого эпителия, но и для ассоциированных с опухолью фибробластов. С применением технологии лазерной микродиссекции мы разделили эпителиальный и стромальный компоненты рака предстательной железы и провели микросателлитный анализ хромосомных районов 8р22, 13q14 и 16q23 в неопластических и стромальных клетках при раке предстательной железы и предраковых изменениях. В эпителии частота аллельных нарушений в локусах 8р22, 16q23 и 13q14 составила 48, 72 и 37% соответственно. В строме частота потери гетерозиготности и микросателлитной нестабильности в этих локусах была немного выше. В небольшом количестве молекулярные перестройки обнаружены как в эпителиальном (от 16 до 27%), так и в стромальном компоненте простатической интраэпителиальной неоплазии (от 7 до 22%). Выявлены статистически достоверные ассоциации потерь аллелей на хромосомах 16 и 13 в эпителии со степенью дифференцировки опухоли, стадией злокачественного процесса и метастазами в регионарных лимфоузлах. Результаты нашей работы свидетельствуют о том, что в строме рака предстательной железы происходят многочисленные мутационные события, частота которых не уступает частоте в опухолевом эпителии.

FREQUENT ALLELIC LOSSES IN TUMOR-ASSOCIATED STROMAL CELLS AND TUMOR EPITELIUM OF PROSTATE CANCER, by T. V. Kekeeva1, 2, O. P. Popova2 , P. V. Shegai3, L. E. Zavalishina3, Y. Y. Andreeva3, D. V. Zaletaev1, 2, M. V. Nemtsova1, 2 (1Medical Genetic Research Centre, Russian Academy of Medical Sciences, Moscow, 115478 Russia, *e-mail: zalnem@online.ru; 2Institute of Molecular Medicine, Sechenov Medical Academy, Moscow, 119992 Russia; 3Moscow Herzen Oncological Research Institute, Moscow, 125284 Russia). It has become increasingly clear that tumor microenvironment plays a critical role in carcinogenesis. Accumulation of genetic alterations is typical not only for cancer epithelial cells but tumor-associated fibroblasts as well. Tumor epithelia, tumor-associated stroma from prostatectomy specimens of patients with prostate cancer and cells from prostatic intraepithelial neoplasia (PIN) and adjacent stroma from males with PIN were isolated by using laser capture microdissection. Microsatellite allelotyping was evaluated using 4 highly polymorphic markers for chromosomal regions 8p22, 16q23–24 and 13q14. Incidences of alterations (loss of heterozygosity or allelic imbalance) were 48% for region 8p22, 72% for 16q23 and 37% for 13q14. The LOH frequencies in tumor-associated stroma cells were very similar. Alterations at chromosome 13q were significantly associated with advanced tumor stage, whereas AI at 16q was also associated with high Gleason score and lymph node metastasis. We find some incidences of allelic imbalance in premalignant lesions in epithelial (16–27%) and stromal (7–22%) components. Our results show that the frequencies of genetic aberrations are as high in stromal cells as in tumor cells.

Key words: prostate cancer, laser capture microdissection, loss of heterozygosity, allelic imbalance, tumor microenvironment.

Список литературы

  1. Jemal A., Sieuel R., Ward E., et al. 2006. Cancer statistics. CA Cancer J. Clin. 56, 6–30.
  2. Bhowmick N., Neilson E., Moses H. 2004. Stromal fibroblasts in cancer initiation and progression. Nature. 432, 332–337.
  3. Maffini M., Soto A., Calabro J., et al. 2004. The stroma as a crucial target in rat mammary gland carcinogenesis. J. Cell Sci. 117.1495–502.
  4. Olumi A., Grossfeld G., Hayward S., et al. 1999. Carcinoma-associated fibroblasts direct tumor progression of initiated human prostate epithelium. Cancer Res. 59, 5002–5011.
  5. Ricke W., Wang Y., Kurita T., et al. 2005. Hormonal and stromal regulation of normal and neoplastic prostatic growth. In: Progress in Molecular and Subcellular Biology. Developmental Biology of Neoplastic Growth. Eds Muller W., Jeanteur P., Kuchino Y., Macieira-Coelho A., Rhoads R. Springer. 40, 183–216.
  6. Joshua A., Vukovic B., Braude I., et al. 2007. Telomere attrittion in isolated high-grade prostatic intraepithelial neoplasia and surrounding stroma is predictive of prostate cancer. Neoplasia. 9, 81–89.
  7. Frank W., Xu M., Zhang M., et al. 2007. Microenvironmental genomic alterations and clinicopathological behavior in head and neck squamous cell carcinoma targets for therapeutic and preventive intervention. JAMA. 297, 187–195.
  8. Fukino K., Shen L., Matsumoto S., et al. 2004. Combined total genome loss of heterozygosity scan of breast cancer stroma and epithelium reveals multiplicity of stromal targets. Cancer Res. 64, 7231–7236.
  9. Paterson R., Ulbright T., MacLennan G., et al. 2003. Molecular genetic alterations in the laser-capture-microdissected stroma adjacent to bladder carcinoma. Cancer. 98, 1830–1836.
  10. Rodriguez-Canales J., Hanson J., Tangrea M., et al. 2007. Identification of a unique epigenetic sub-microenvironment in prostate cancer. J. Pathol. 211. 410–419.
  11. Moinfar F., Man Y., Arnould L., et al. 2000. Concurrent and independent genetic alterations in the stromal and epithelial cells of mammary carcinoma: implications for tumorigenesis. Cancer Res. 60, 2562–2566.
  12. Hu M., Yao J., Cai L., et al. 2005. Distinct epigenetic changes in the stromal cells of breast cancers. Nature Genet. 37, 899–905.
  13. Hanson J., Gillespie J., Grover A., et al. 2006. Gene promoter methylation in prostate tumor-associated stromal cells. J. Natl. Cancer Inst. 98, 255–261.
  14. Kurose K., Gilley K., Matsumoto S., et al. 2002. Frequent somatic mutations in PTEN and TP53 are mutually exclusive in the stroma of breast carcinomas. Nature Genet. 32, 355–357.
  15. Kurose K., Hoshaw-Woodard S., Adeyinka A., et al. 2001. Genetic model of multi-step breast carcinogenesis involving the epithelium and stroma: clues to tumour-microenvironment interactions. Hum. Mol. Genet. 10. 1907–1913.
  16. McCarthy R., Zhang S., Bostwick D., et al. 2004. Molecular genetic evidence for different clonal origins of epithelial and stromal components of phyllodes tumor of the prostate. Am. J. Pathol. 165, 1395–1400.
  17. Knobloch R., Konrad L., Barth P., et al. 2004. Genetic pathways and new progression markers for prostate cancer suggested by microsatellite allelotyping. Clin. Cancer Res. 10, 1064–1073.
  18. Matsuyama H., Pan Y., Oba K., et al. 2001. Deletions on chromosome 8p22 may predict disease progression as well as pathological staging in prostate cancer. Clin. Cancer Res. 7, 3139–3143.
  19. Paris P., Witte J., Kupelian P., et al. 2000. Identification and fine mapping of a region showing a high frequency of allelic imbalance on chromosome 16q23.2 that corresponds to a prostate cancer susceptibility locus. Cancer Res. 60, 3645–3649.
  20. Melamed J., Einhorn J., Ittmann M. 1997. Allelic loss on chromosome 13q in human prostate carcinoma. Clin. Cancer Res. 3, 1867–1872.
  21. Nakayama М., Bennett C., Hicks J., et al. 2003. Hypermethylation of the human glutation s-transferase-p gene (GSTP1) CpG island is present in a subset of proliferative inflammatory atrophy lesions but not in normal or hyperplastic epitelium of the prostate. Am. J. Pathol. 163, 923–933.
  22. Землякова В., Жевлова А., Стрельников В. и др. 2003. Аномальное метилирование некоторых генов-супрессоров при спорадическом раке молочной железы. Молекуляр. биология. 37, 696–703.
  23. Barclay W., Woodruff R., Hall M., Cramer S. 2005. A system for studying epithelial-stromal interactions reveals distinct inductive abilities of stromal cells from benign prostatic hyperplasia and prostate cancer. Endocrinology. 146, 13–18.
  24. Barcellos-Hoff M., Ravani S. 2000. Irradiated mammary gland stroma promotes the expression of tumorigenic potential by unirradiated epithelial cells. Cancer Res. 60, 1254–1260.
  25. Arbieva Z., Banerjee K., Kim S., et al. 2000. High-resolution physical map and transcript identification of prostate cancer deletion interval on 8p22. Genome Res. 10, 244–257.
  26. Ai-Maghrabi J., Vorobyova L., Toi A., et al. 2002. Identification of numeral chromosomal changes detected by interphase fluorescence in situ hybridization in high-grade prostate intraepithelial neoplasia as a predictor of carcinoma. Arch. Pathol. Lab. Med. 126, 165–169.


PII: S0026898408010126

[ Предыдущий / Следующий Обзор | Содержание Выпуска | Начало Страницы ]